Interacción in vitro de la microbiota vaginal en ovejas y la viabilidad espermática del semen ovino fresco

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.70577/asce.v5i4.1118

Palabras clave:

agua de coco, CASA, leche UHT, Microbiota Vaginal Eubiotica, MRS.

Resumen

La microbiota vaginal desempeña un papel fundamental en el mantenimiento de la homeostasis del tracto reproductivo y fertilidad de los animales. En ovinos, su composición difiere de la descrita en otras especies ampliamente estudiadas donde los lactobacilos abundan, lo que se asocia con características fisiológicas particulares en el ovino, como un pH vaginal cercano a la neutralidad. A pesar de su importancia, la información disponible sobre la microbiota vaginal ovina y, especialmente, sobre su interacción in vitro con el germoplasma masculino ovino es aún limitada. Este estudio no experimental y exploratorio tuvo como objetivo determinar las condiciones técnicas necesarias para establecer in vitro la interacción entre la microbiota vaginal de ovejas y la viabilidad espermática del semen ovino fresco. A partir de ello, se desarrolló un protocolo de aislamiento anaerobio en medio MRS, orientado a la recuperación de microbiota vaginal nativa con potencial aplicación en biotecnologías reproductivas que involucren el manejo de semen. Asimismo, se demostró que el empleo de diluyentes alternativos, como agua de coco y leche UHT, junto con los extensores seminales, permite preservar simultáneamente la viabilidad bacteriana y espermática bajo las condiciones experimentales evaluadas. Finalmente, la caracterización fenotípica confirmó el aislamiento de cepas nativas de la microbiota vaginal, mientras que la evaluación mediante el sistema CASA evidenció que la interacción entre la microbiota y el semen no compromete la calidad espermática. En conjunto, estos hallazgos proporcionan una base metodológica para su uso en futuras investigaciones sobre la interacción microbiota y semen en protocolos de biotecnología reproductiva en ovinos.

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Abdel-Aziz Swelum, A., M Saadeldin, I., Ba-Awadh, H., G Al-Mutary, M., F Moumen, A., N Alowaimer, A., & Abdalla, H. (2019). Efficiency of Commercial Egg Yolk-Free and Egg Yolk-Supplemented Tris-Based Extenders for Dromedary Camel Semen Cryopreservation. Animals : an open access journal from MDPI, 9(11), 999. https://doi.org/10.3390/ani9110999 DOI: https://doi.org/10.3390/ani9110999

Asaduzzaman, M., Saha, A., Alam, M. G. S., & Bari, F. Y. (2021). Cost comparison of artificial insemination and natural service in sheep breeding system. Online Journal of Animal and Feed Research, 11(4), 126–130. https://doi.org/10.51227/ojafr.2021.19 DOI: https://doi.org/10.51227/ojafr.2021.19

Cavalcante, J. M. M., Brasil, O. O., Salgueiro, C. C. M., Salmito-Vanderley, C. S. B., & Nunes, J. F. (2014). Criopreservação do sêmen ovino em meio diluente à base de água de coco em pó (ACP-102c). Ciência Animal Brasileira, 15(3), 344–353. https://doi.org/10.1590/1809-6891v15i327834 DOI: https://doi.org/10.1590/1809-6891v15i327834

Galarza, D. A., López-Sebastián, A., & Santiago-Moreno, J. (2020). Supplementing a skimmed milk–egg yolk-based extender with L-carnitine helps maintain the motility, membrane integrity and fertilizing capacity of chilled ram sperm. Reproduction in Domestic Animals, 55(7), 805–813. https://doi.org/10.1111/rda.13687 DOI: https://doi.org/10.1111/rda.13687

Gasperin Guazzelli Costa, V., Pereira de Moraes, F., Tomazele Rovani, M., Ferreira, R., Farias Vargas, J. S., Caetano de Oliveira, F., Garziera Gasperin, B., Ivan Gehrcke, M., Diniz Vieira, A., & Mondadori, R. G. (2026). Laparoscopic Artificial Insemination Affects Stress and Inflammatory Markers in Ewes. Journal of applied animal welfare science : JAAWS, 29(3), 491–500. https://doi.org/10.1080/10888705.2025.2564991 DOI: https://doi.org/10.1080/10888705.2025.2564991

Reinoso-Peláez, E. L., Puente-Sánchez, F., Serrano, M., Calvo, J. H., Ramón, M., & Saura, M. (2026). Characterization of bacterial communities of ewe’s vaginal tract and its potential impact on reproductive efficiency. Animal Microbiome, 7, 48. https://doi.org/10.1186/s42523-025-00383-2 DOI: https://doi.org/10.1186/s42523-025-00383-2

Reis, R., R. A., Torres, R. N. S., Ribeiro, I. M., Torres, C. A. A., & de Freitas, B. W. (2023). Coconut water-based extender for seminal preservation in small ruminants: A meta-analysis study. Small Ruminant Research, 220, Article 106915. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2023.106915 DOI: https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2023.106915

Rizkallah, N., Chambers, C. G., de Graaf, S. P., & Rickard, J. P. (2022). Factors affecting the survival of ram spermatozoa during liquid storage and options for improvement. Animals, 12(3), Article 244. https://doi.org/10.3390/ani12030244 DOI: https://doi.org/10.3390/ani12030244

Serrano, M., Climent, E., Freire, F., Martínez-Blanch, J. F., González, C., Reyes, L., Solaz-Fuster, M. C., Calvo, J. H., Jiménez, M. Á., & Codoñer, F. M. (2020). Influence of the Ovine Genital Tract Microbiota on the Species Artificial Insemination Outcome. A Pilot Study in Commercial Sheep Farms. High-throughput, 9(3), 16. https://doi.org/10.3390/ht9030016 DOI: https://doi.org/10.3390/ht9030016

Swartz, J. D., Held, J., Epperson, W., Daniel, J., & Perry, G. (2014). Characterization of the vaginal microbiota of ewes and cows reveals a unique microbiota with low levels of Lactobacilli and near-neutral pH. Frontiers in Veterinary Science, 1, 19. DOI: 10.3389/fvets.2014.00019 DOI: https://doi.org/10.3389/fvets.2014.00019

Toledo-Perona, R., Gomis, J., Sánchez, A., Toquet, M., Bailon-Larrañaga, N., Bataller, E., De la Fe, C., & Gómez-Martín, Á. (2026). Addition of lactic acid bacteria to diluted ram semen as vehicle for vaginal inoculation: interaction with seminal microbiota, sperm quality and antibacterial in vitro effect against Mycoplasma agalactiae. BMC Veterinary Research, 22(1), Artículo 236. https://doi.org/10.1186/s12917-026-05536-2 DOI: https://doi.org/10.1186/s12917-026-05536-2

Yániz, J. L., Marco-Aguado, M. A., Mateos, J. A., & Santolaria, P. (2010). Bacterial contamination of ram semen, antibiotic sensitivities, and effects on sperm quality during storage at 15°C. Animal reproduction science, 122(1-2), 142–149. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2010.08.006 DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2010.08.006

Zhao, X., Lv, Y., Adam, F. E. A., Xie, Q., Wang, B., Bai, X., Wang, X., Shan, H., Wang, X., Liu, H., Dang, R., Wang, J., & Yang, Z. (2021). Comparison of antimicrobial resistance, virulence genes, phylogroups, and biofilm formation of Escherichia coli isolated from intensive farming and free-range sheep. Frontiers in Microbiology, 12, Article 699927. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.699927 DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.699927

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Publicado

2026-10-07

Cómo citar

Sarmiento Leraux, G. O., Martínez Tacuri, D. L., Maldonado Cornejo, M. E., Tamayo Avendaño, S. P., Alvarado Alvarado, J. C., & Moscoso Piedra, A. L. (2026). Interacción in vitro de la microbiota vaginal en ovejas y la viabilidad espermática del semen ovino fresco. ASCE MAGAZINE, 5(4), 66–84. https://doi.org/10.70577/asce.v5i4.1118

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